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    人組胺(HIS)ELISA試劑盒說明書

    發布時間: 2010-11-11  點擊次數: 1762次

    預期應用
    ELISA法定量測定人血清、血漿或其它相關生物液體中組胺(HIS)含量。
     
    實驗原理
    用純化的抗體包被微孔板,制成固相載體,往包被抗HIS抗體的微孔中依次加入標本或標準品、生物素化的抗HIS抗體、HRP標記的親和素,經過*洗滌后用底物TMB顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉化成藍色,并在酸的作用下轉化成zui終的。顏色的深淺和樣品中的HIS呈正相關。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度(OD值),計算樣品濃度。
     
    試劑盒組成及試劑配制
    1.        酶聯板:一塊(96孔)
    2.        標準品(凍干品):2瓶,每瓶臨用前以樣品稀釋液稀釋至1ml,蓋好后靜置10分鐘以上,然后反復顛倒/搓動以助溶解,其濃度為200 ng/ml,將其稀釋為100 ng/ml后,再做系列倍比稀釋(注:不要直接在板中進行倍比稀釋),分別稀釋100 ng/ml,50 ng/ml,25 ng/ml,12.5 ng/ml,6.25 ng/ml,3.12 ng/ml,1.56 ng/ml,樣品稀釋液直接作為標準濃度0 ng/ml,臨用前15分鐘內配制。如配制50 ng/ml標準品:取0.5ml(不要少于0.5ml)100 ng/ml的上述標準品加入含有0.5ml樣品稀釋液的Eppendorf管中,混勻即可,其余濃度以此類推。
    3.        樣品稀釋液:1×20ml。
    4.        檢測稀釋液A:1×10ml。
    5.        檢測稀釋液B:1×10ml。
    6.        檢測溶液A:1×120μl(1:100)臨用前以檢測稀釋液A 1:100稀釋,稀釋前根據預先計算好的每次實驗所需的總量配制(100μl/孔),實際配制時應多配制0.1-0.2ml。如10μl檢測溶液A加990μl檢測稀釋液A的比例配制,輕輕混勻,在使用前一小時內配制。
    7.        檢測溶液B:1×120μl/瓶(1:100)臨用前以檢測稀釋液B 1:100稀釋。稀釋方法同檢測溶液A。
    8.        底物溶液:1×10ml/瓶。
    9.        濃洗滌液:1×30ml/瓶,使用時每瓶用蒸餾水稀釋25倍。
    10.    終止液:1×10ml/瓶(2N H2SO4)。
    11.    覆膜:5張
    12.    使用說明書:1份
     
    自備物品
    1.   酶標儀(建議參考儀器使用說明提前預熱)
    2.   微量加液器及吸頭,EP管
    3.   蒸餾水或去離子水,全新濾紙
     
    標本的采集及保存
    1.        血清:全血標本請于室溫放置2小時或4℃過夜后于1000 x g離心20分鐘,取上清即可檢測,或將標本放于-20℃或-80℃保存,但應避免反復凍融。
    2.        血漿:可用EDTA或肝素作為抗凝劑,標本采集后30分鐘內于2 - 8° C 1000 x g離心15分鐘,或將標本放于-20℃或-80℃保存,但應避免反復凍融。
    3.        其它生物標本:請1000 x g離心20分鐘,取上清即可檢測,或將標本放于-20℃或-80℃保存,但應避免反復凍融。
    注:以上標本置4℃保存應小于1周,-20℃或-80℃均應密封保存,-20℃不應超過1個月,-80℃不應超過2個月;標本溶血會影響zui后檢測結果,因此溶血標本不宜進行此項檢測。
     
    操作步驟
    實驗開始前,各試劑均應平衡至室溫(試劑不能直接在37℃溶解);試劑或樣品稀釋時,均需混勻,混勻時盡量避免起泡。實驗前應預測樣品含量,如樣品濃度過高時,應對樣品進行稀釋,以使稀釋后的樣品符合試劑盒的檢測范圍,計算時再乘以相應的稀釋倍數。
    1.        加樣:分別設空白孔、標準孔、待測樣品孔。空白孔加樣品稀釋液100μl,余孔分別加標準品或待測樣品100μl,注意不要有氣泡,加樣將樣品加于酶標板孔底部,盡量不觸及孔壁,輕輕晃動混勻,酶標板加上蓋或覆膜,37℃反應120分鐘。為保證實驗結果有效性,每次實驗請使用新的標準品溶液。
    2.        棄去液體,甩干,不用洗滌。每孔加檢測溶液A工作液 100μl(在使用前一小時內配制),酶標板加上覆膜, 37℃反應60分鐘。
    3.        溫育60分鐘后,棄去孔內液體,甩干,洗板3次,每次浸泡1-2分鐘,大約400μl/每孔,甩干(也可輕拍將孔內液體拍干)。
    4.        每孔加檢測溶液B工作液(同檢測A工作液) 100μl,酶標板加上覆膜37℃反應60分鐘。
    5.        溫育60分鐘后,棄去孔內液體,甩干,洗板5次,每次浸泡1-2分鐘,350μl/每孔,甩干(也可輕拍將孔內液體拍干)。
    6.        依序每孔加底物溶液90μl,酶標板加上覆膜37℃避光顯色(30分鐘內,此時肉眼可見標準品的前3-4孔有明顯的梯度蘭色,后3-4孔梯度不明顯,即可終止)。
    7.        依序每孔加終止溶液50μl,終止反應,此時藍色立轉。終止液的加入順序應盡量與底物液的加入順序相同。為了保證實驗結果的準確性,底物反應時間到后應盡快加入終止液。
    8.        用酶聯儀在450nm波長依序測量各孔的光密度(OD值)。 在加終止液后立即進行檢測。
     
    注:
    1.  試劑準備:所有試劑都必須在使用前達到室溫,使用后請立即按照說明書要求保存試劑。  實驗操作中請使用一次性的吸頭,避免交叉污染。
    2.   加樣:加樣或加試劑時,請注意在吸取標本 / 標準品,酶結合物或底物時,*個孔與zui后一個孔加樣之間的時間間隔如果太大,將會導致不同的 “預孵育”時間,從而明顯地影響到測量值的準確性及重復性。一次加樣時間(包括標準品及所有樣品)控制在10分鐘內,如標本數量多,推薦使用多道移液器加樣。
    3.   孵育:為防止樣品蒸發,試驗時將反應板放于鋪有濕布的密閉盒內,酶標板加上蓋或覆膜,以避免液體蒸發;洗板后應盡快進行下步操作,任何時侯都應避免酶標板處于干燥狀態;同時應嚴格遵守給定的孵育時間和溫度。
    4.   洗滌:洗滌過程中反應孔中殘留的洗滌液應在濾紙上充分拍干,勿將濾紙直接放入反應孔中吸水,同時要消除板底殘留的液體和手指印,避免影響zui后的酶標儀讀數。
    5.  試劑配制:Detection A及Detection B在使用前請手甩幾下或少時離心處理,以使管壁或瓶蓋的液體沉積到管底。標準品、檢測溶液A工作液、檢測溶液B工作液請依據所需的量配置使用,并使用相應的稀釋液配制,不能混淆。請配置標準品及工作液,盡量不要微量配置(如吸取檢測溶液A時,一次不要小于10μl),以避免由于不準確稀釋而造成的濃度誤差;請勿重復使用已稀釋過的標準品、檢測溶液A工作液或檢測溶液B工作液。
    6.  反應時間的控制:加入底物后請定時觀察反應孔的顏色變化(比如,每隔10分鐘),如顏色較深,請提前加入終止液終止反應,避免反應過強從而影響酶標儀光密度讀數。
    7.  底物:底物請避光保存,在儲存和溫育時避免強光直接照射。
        建議檢測樣品時均設雙孔測定,以保證檢測結果的準確性。
        如標本中待測物質含量過高,請先稀釋后再測定,計算時請zui后乘以稀釋倍數。
     
    洗板方法
    1.  手工洗板方法:吸去(不可觸及板壁)或甩掉酶標板內的液體;在實驗臺上鋪墊幾層吸水紙,酶標板朝下用力拍幾次;將推薦的洗滌緩沖液至少0.3ml注入孔內,浸泡1-2分鐘,根據需要,重復此過程數次。
    2.  自動洗板:如果有自動洗板機,應在熟練使用后再用到正式實驗過程中。
     
    特異性
        本試劑盒可同時檢測重組或天然的人HIS,且與其它相關蛋白無交叉反應。
     
    計算
      以標準物的濃度為縱坐標(對數坐標),OD值為橫坐標(對數坐標),在對數坐標紙上繪出標準曲線。推薦使用專業制作曲線軟件進行分析,如curve expert 1.3,根據樣品的OD值由標準曲線查出相應的濃度,再乘以稀釋倍數;或用標準物的濃度與OD值計算出標準曲線的回歸方程式,將樣品的OD值代入方程式,計算出樣品濃度,再乘以稀釋倍數,即為樣品的實際濃度。
     
    檢測范圍:1.56 ng/ml - 100 ng/ml
     
    zui低檢測限:0.78 ng/mL
     
    說明
    1.         在儲存及孵育過程中避免將試劑暴露在強光中。所有試劑瓶蓋須蓋緊以防止蒸發和污染,試劑避免受到微生物的污染,因為蛋白水解酶的干擾將導致出現錯誤的結果。
    2.         試劑盒保存:請收到試劑盒后盡快將標準品、檢測溶液A和檢測溶液B保存于-20℃,其余試劑短期保存請置于4℃,長期保存則置于-20℃。
    3.         濃洗滌液會有鹽析出,稀釋時可在水浴中加溫助溶。
    4.         剛開啟的酶聯板孔中可能會有少許水樣物質,此為正?,F象,不會對實驗結果造成任何影響。
    5.         所有的樣品都應管理好,按照規定的程序處理樣品和檢測裝置。
    6.         有效期:6個月。
     

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